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上海宇淳生物科技有限公司

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蛋白含量(SP)試劑盒(考馬斯亮藍法)
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【簡單介紹】
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蛋白含量(SP)試劑盒(考馬斯亮藍法)
在酸性溶液中,考馬斯亮藍 G-250 與蛋白質結合形成藍色復合物;經(jīng)光譜掃描,該藍色復合物在 600nm 處有吸收峰,在一定的蛋白濃度范圍(1-1000μg/mL)內(nèi),其顏色的深淺與蛋白質的含量成正比。

蛋白含量(SP)試劑盒(考馬斯亮藍法)

蛋白含量(SP)試劑盒(考馬斯亮藍法)

本試劑盒僅供科研使用 1 考馬斯亮藍法測蛋白含量試劑盒說明書 (貨號:WS7140F 分光法 48 樣) 一、產(chǎn)品簡介: 在酸性溶液中,考馬斯亮藍 G-250 與蛋白質結合形成藍色復合物;經(jīng)光譜掃描,該 藍色復合物在 600nm 處有吸收峰,在一定的蛋白濃度范圍(1-1000μg/mL)內(nèi),其 顏色的深淺與蛋白質的含量成正比。 二、測試盒組成和配制: 試劑名稱 規(guī)格 保存要求 備注 試劑一 液體 40mL×1 4℃保存 標準品 液體 1mL×1 4℃保存 若重新做標曲,則用到該試劑 三、所需的儀器和用品: 可見分光光度計、1mL 玻璃比色皿(光徑 1cm)、離心機、可調(diào)式移液器、研缽。 四、蛋白含量檢測: 建議正式實驗前選取 2 個樣本做預測定,了解本批樣品情況,熟悉實驗流程,避免實驗 樣本和試劑浪費! 1、樣本制備: 1 組織樣本: 稱取約 0.1g 組織,加入 1mL 提取液(提取液可選用酶提取緩沖液、蒸餾水、生理鹽 水)冰浴勻漿,12000rpm,4℃離心 10min,取上清,即待測液。 【注】:依據(jù)研究經(jīng)驗,一般需將樣本粗提液稀釋到適當倍數(shù)再進行測定,如 10 倍。實 驗前可以先選 2 個樣本測定,摸索確定適合本次實驗的稀釋倍數(shù)。 2 細菌或細胞樣本: 先收集細菌或細胞到離心管內(nèi),離心后棄上清;取 500 萬細菌或細胞加入 1mL 提取 液;超聲波破碎細菌或細胞(冰浴,功率 20%或 200W,超聲 3s,間隔 10s,重復 30 次),12000rpm,4℃離心 10min,取上清,置冰上待測。 【注】:依據(jù)研究經(jīng)驗,一般需將樣本粗提液稀釋到適當倍數(shù)再進行測定,如 10 倍。實 驗前可以先選 2 個樣本測定,摸索確定適合本次實驗的稀釋倍數(shù)。 3 液體樣本:澄清無色液體樣品可以直接測定。若渾濁,離心后取上清檢測。 【注】:依據(jù)研究經(jīng)驗,一般需將樣本稀釋到適當倍數(shù)再進行測定,如 10 倍。實驗前可 以先選 2 個樣本測定,摸索確定適合本次實驗的稀釋倍數(shù)。 2、上機檢測① 分光光度計預熱 30 min 以上,設定波長為 600nm,蒸餾水調(diào)零。 ② 在 EP 管中依次加入: 試劑名稱(μL測定管 空白管(只做一次) 待測液 160 蒸餾水 160 試劑一 800 800 混勻,置于室溫(25℃)靜置 10min,全部液體轉移至 1mL 玻璃比色皿中,600nm 處測定吸光值 A5~15min 完成比色), A=A 測定管-A 空白管。 【注】:1.確保蛋白濃度在 0~100µg/ml 范圍內(nèi),否則需要做相應稀釋,即使 A 測定的值低于 1.5;稀 釋倍數(shù) D 帶入公式計算。 2.去污劑、Triton X-100、十二烷基硫酸鈉(SDS)和 0.1mol/L NaOH 溶液對該實驗會有影響。本試劑盒僅供科研使用 2 五、結果計算: 1、標準曲線:y = 5.8086x + 0.0322;x 是標準品濃度(mg/mL),y A。 2、蛋白含量(mg/g 鮮重)=[(A-0.0322)÷5.8086×V1]÷(W×V1÷V)×D =0.172×(A-0.0322)×D÷W 3、蛋白含量(mg/mL)=[ (A-0.0322)÷5.8086×V1]÷V1×D=0.172×(A-0.0322)×D V---提取液體積:1mL; V1---加入粗提液體積:0.16mLW---樣本質量:g; D---稀釋倍數(shù),未稀釋即為 1。 附:標準曲線制作過程: 1 標準品母液(0.5mg/mL)。 2 把母液用蒸餾水稀釋成以下濃度梯度的標準品:0, 0.02, 0.04, 0.06, 0.08, 0.1. mg/mL也可根據(jù)實際樣本來調(diào)整標準品濃度。 3 依據(jù)測定管加樣表操作,根據(jù)結果即可制作標準曲線。



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