[實(shí)驗(yàn)原理]
Trizol試劑是直接從細(xì)胞或組織中提取總rna的試劑。它在破碎和溶解細(xì)胞時(shí)能保持RNA的完整性，裂解細(xì)胞并釋放出RNA,酸性條件使RNA與DNA分離,加入氯仿后離心，樣品分成水樣層和有機(jī)層。RNA存在于水樣層中。收集上面的的水樣層后，RNA可以通過異丙醇沉淀來還原。在除去水樣層后，樣品中的DNA和蛋白也能相繼以沉淀的方式還原。乙醇沉淀能析出中間層的DNA，在有機(jī)層中加入異丙醇能沉淀出蛋白。共純化DNA對于樣品間標(biāo)準(zhǔn)化RNA的產(chǎn)量十分有用。
無論是人、動(dòng)物、植物還是細(xì)菌組織，各種樣品zui大使用量（1ml Trizol），動(dòng)物組織（ 50mg），植物組織（100 mg），絲狀真菌（ 100mg），動(dòng)物細(xì)胞（5×106～1×107），酵母（1×107） 。
TRIZOL試劑能促進(jìn)不同種屬不同分子量大小的多種RNA的析出。例如，從大鼠肝臟抽提的RNA瓊脂糖凝膠電泳并用溴化乙啶染色，可見許多介于7 kb和15 kb之間不連續(xù)的高分子量條帶，（mRNA和hnRNA成分）兩條優(yōu)勢核糖體RNA條帶位于~5 kb （28S）和~2 kb （18S），低分子量RNA介于0.1 和 0.3 kb之間 （tRNA, 5S）。當(dāng)抽提的RNA用TE稀釋時(shí)其A260/A280比值≥1.8 。
[實(shí)驗(yàn)用品]
【實(shí)驗(yàn)耗材】
1、移液槍：1ml、200μl、20μl、10μl、2μl。酒精擦拭，頭部重點(diǎn)，紫外線照射。
2、吸頭：1ml、200μl、20μl
3、勻漿管：5ml
4、吸頭臺(tái)：放置1ml吸頭的一個(gè)，放置20μl吸頭的一個(gè)
5、EP管：1.5ml、0.2ml、100μl
6、試劑瓶：2個(gè)60ml的棕色廣口試劑瓶。小瓶（分裝無水乙醇，高壓的DEPC水，-20°C保存）。
7、量筒：50ml、250ml、500ml
8、容量瓶：250ml、500ml、1000ml
9、試管架：5ml、1.5ml、20μl
10、鹽水瓶：250ml、500ml各2個(gè)備用，一個(gè)裝無水乙醇，另一個(gè)裝DEPC水
11、鋁制飯盒：4個(gè)
12、塑料小飯盒：1個(gè)
13、大瓷缸：2個(gè)
14、錫泊紙：一卷
15、卷紙：2卷
16、三角燒瓶：帶蓋，稍大（融瓊脂糖）
【實(shí)驗(yàn)儀器】
天平、振蕩器、高速離心機(jī)、0.5～10ul、20～200ul、100～1000ul加樣器。
【自備試劑】
DEPC（焦碳酸二乙酯）,氯仿，異丙醇，無水乙醇，0.05～0.1%DEPC-H2O，75%乙醇，TE緩沖液，瓊脂糖。
RNA抽提的準(zhǔn)備工作
【試劑配制】
1.DEPC水： 1ml+1000ml雙蒸水=1‰ DEPC水，1000ml容量瓶中靜置4小時(shí)。
2.75%乙醇：無水乙醇+DEPC水，-20℃保存（DEPC水需先高壓）
3.氯仿：棕色瓶
4.異丙醇：棕色瓶
【器具處理與準(zhǔn)備】
1.塑料制品：（包括槍頭、EP管、勻漿管等）
先將DEPC水從容量瓶中倒入瓷缸中，將塑料制品逐個(gè)浸泡其中，小槍頭需打入DEPC水，室溫過夜，高壓，烤干備用，實(shí)驗(yàn)前將槍頭等放入吸頭臺(tái)，再高壓一次（EP管）。膠塞同樣處理。塑料器皿也可在0.5 M NaOH中浸泡10分鐘，用水*漂洗干凈后高壓滅菌備用。
2.玻璃制品：
泡酸過夜，沖洗干凈，1 ‰DEPC過夜，蒙錫紙，150°C烘烤4h，180°C，2h?；蚺菟徇^夜，沖洗干凈后高溫烘烤，1 ‰DEPC過夜，高壓。盛裝乙醇，DEPC水用。
3.勻漿器：（包括剪刀、鑷子）先洗凈后，再高壓（不需要泡DEPC）
[實(shí)驗(yàn)內(nèi)容和方法]
一、抽提
（一）組織抽提
1.組織取材后用滅菌的錫箔紙包好保存于液氮。實(shí)驗(yàn)時(shí)，在液氮中將組織研磨成粉末，趁液氮未揮發(fā)將粉末轉(zhuǎn)移到EP管，室溫5000rpm離心去上清。每50-100mg組織，加入1ml Trizol。
2.若是新鮮標(biāo)本經(jīng)勻漿后轉(zhuǎn)移離心管，加入1ml Trizol。
3.若組織量（1～10 mg）或細(xì)胞數(shù)很少（102～104），在樣品中加入800 ul Trizol反復(fù)抽吸均勻，再加入糖原（終250ug/ml）,劇烈振蕩或用勻漿器勻漿。
4.在勻化后和加入氯仿之前，樣品可以在–60～70°C保存至少一個(gè)月。
（二）細(xì)胞抽提
1.倒掉培養(yǎng)基，PBS洗，直接將1ml Trizol 注入培養(yǎng)瓶（5×106），反復(fù)抽吸均勻。
2.或收集細(xì)胞后加入Trizol 反復(fù)抽吸均勻。
二、分相
3.在裝有裂解物的離心管中加入0.2ml的氯仿（為Trizol總體積的1/5）,振蕩混均30秒，室溫下靜置5分鐘.
4. 12000 rpm 15分鐘4°C,分相為三層。上層：RNA（約為Trizol的60%）;中間：DNA;下層:蛋白質(zhì)（酚-氯仿）。
5.小心吸取上清液，轉(zhuǎn)移到另一EP管中。1ml裂解物產(chǎn)生的上清液體積約為0.4～0.6 ml。有機(jī)相和中間層含有DNA和蛋白質(zhì),避免觸及。
三、RNA沉淀
6.上清液加入約0.5ml的異丙醇,振蕩混均30秒。室溫下靜置10分鐘。
7.離心12000rpm 10分鐘4°C。
8. RNA沉淀將在離心底的側(cè)面形成。小心吸棄上清液,注意避免吸棄RNA沉淀。
四、RNA清洗
9.離心管加入1ml 預(yù)冷的75%乙醇（1mlTrizol至少1ml乙醇清洗DNA）,振蕩混均30秒，使沉淀振蕩起來，室溫12000rpm×1～2分鐘。（有文獻(xiàn)稱不超過7500g離心）。盡可能吸棄上清液,防止RNA沉淀丟失。重復(fù)以上清洗步驟一次。在75%乙醇中，RNA在4℃至少保存1周，-20℃至少保存1年。
10.室溫選擇流動(dòng)性小，倒置離心管于濾紙上，干燥RNA，但不能*干燥（5～10分鐘）。用DEPC水15μl溶解沉淀，55-60℃孵育10～15分鐘。
11.測量OD值后，樣品放置-70℃保存，一個(gè)月
五、RNA、DNA濃度的計(jì)算
取78μl DEPC水加2μl 第10步液體，則稀釋倍數(shù)為40倍。
【RNA】=A260 X 40 X n/1000μg/μl
【DNA】=A260 X 50 X n/1000μg/μl（n為稀釋倍數(shù)）
分離RNA的理想效果是A260/A280=1.8～2.0
A260代表RNA OD值;A280代表蛋白OD值
[注意事項(xiàng)]
1. RNA產(chǎn)量：每1 mg組織或1×106培養(yǎng)細(xì)胞預(yù)期的RNA產(chǎn)量
（1）肝和脾，6—10μg
（2）腎，3—4μg
（3）骨骼肌和腦組織，1—1.5μg
（4）胎盤，1-4μg
（5）上皮細(xì)胞（1×106 ，8—15μg cultured cells）
（6）纖維母細(xì)胞（1×106 ，5—7μg cultured cells）
2.電泳檢測: 制備甲醛變性，1%瓊脂糖凝膠快速電泳，25ug/lane，65V，2.5h，檢測RNA分子完整性，觀察18S、28S條帶。
3. RNA沉淀*干燥，會(huì)地降低可溶性。部分溶解的RNA其A260/280比值<1.6。用移液管尖分幾次移取無RNA酶的水或0.5% SDS溶解RNA，并在55～60°C下孵育10分鐘，當(dāng)RNA以后要用于酶切反應(yīng)時(shí)，避免使用SDS。
對于胰腺，腎等組織中RNase含量很高，沉淀用去離子甲酰胺溶解，–70°C保存。
4.分離RNA的理想效果是A260/A280=1.8～2.0
【分離膠范圍】<500bp 1.2～1.5%
>10 kp 0.3～0.7%
二者之間 0.8～1.0%
【分析和定量】紫外分光光度計(jì)測定A260及A280來定量分析RNA的純度及濃度。用什么稀釋的RNA，就用其調(diào)零。
5.預(yù)防RNA酶污染
6.在分相步驟吸取上清液過程中，和清洗步驟吸棄上清液過程中，都應(yīng)在不觸及其他相或沉淀的前提下吸取盡可能多的上清液。
7.臺(tái)式離心機(jī)zui大能達(dá)到2,600×g的離心力，如果將離心時(shí)間延長到30-60分鐘可以滿足操作。
8.當(dāng)TRIZOL用量少于2ml時(shí)建議使用清潔的一次性的聚丙材質(zhì)試管。TRIZOL用量較大時(shí)，可以使用玻璃試管（Corex）或聚丙材質(zhì)試管，事先檢驗(yàn)以確保該試管可以耐受加入TRIZOL和氯仿后12,000×g的離心力。不可使用有裂縫或者破損的試管。 離心前小心平衡試管。離心前玻璃管口必須蓋上鋁箔并用石蠟?zāi)し饪?，聚丙烯管必須蓋緊。
9. 用TRIZOL抽提RNA時(shí)要戴手套和護(hù)眼罩。避免接觸皮膚和衣服。在化學(xué)通風(fēng)櫥完成操作。避免呼吸道吸入。
【疑難解答】
一、無RNA沉淀
1. 勻漿不*：勻漿不*時(shí)，基因組DNA分子仍然很大，溶液粘稠。變性的蛋白質(zhì)和基因組DNA一起形成絮狀凝集物容易包裹RNA，使之不能有效地釋放到溶液中。
2..沉淀不*：從小于2×105動(dòng)/植物細(xì)胞、小于2mg動(dòng)物組織、小于4mg
植物組織或RNA含量低的動(dòng)/植物組織中提取RNA時(shí)，勻漿體積太大，將造成RNA過分稀釋而不能沉淀下來。當(dāng)從這樣的樣品中提取RNA時(shí)，應(yīng)按比例減少抽提溶液。
二、抽提率低
1. 系統(tǒng)超負(fù)荷：如果過多增加單位體積內(nèi)的樣品量，將引起系統(tǒng)超負(fù)荷。系統(tǒng)超負(fù)荷常導(dǎo)致勻漿不*、單位體積內(nèi)的DNA和蛋白質(zhì)所占比例增大，使RNA不能有效地釋放到上清中。系統(tǒng)超負(fù)荷還會(huì)導(dǎo)致相分離困難，降低RNA沉淀效率.
2.樣品均化或裂解不*: 勻漿不*時(shí)，RNA分子易被蛋白質(zhì)和基因組DNA復(fù)合物包裹，不能被有效釋放。
3.終RNA不*溶解:未溶解的RNA丟失。
4.樣品未及時(shí)處理或細(xì)胞生長過度：樣品分離后短時(shí)間內(nèi)細(xì)胞內(nèi)RNA酶被激活，細(xì)胞生長過度同樣會(huì)激活細(xì)胞內(nèi)RNA酶，若不及時(shí)提取RNA，大部分RNA會(huì)被降解。若樣品暫時(shí)不作RNA提取，應(yīng)立即用液氮冷凍*，置-80℃貯存。
三、A260/A280 比率 <1.65
1.在分光光度計(jì)測量前用水而不是用TE 緩沖液稀釋RNA樣品。低離子強(qiáng)度和低pH溶液會(huì)增加280 nm處的光吸收值。
2.樣品勻漿化時(shí)所加的TRIZOL量太少。
3.勻漿化后樣品沒有在室溫下放置5分鐘。
4.分離的水樣層中污染有層。
5.終RNA沒有*溶解。
四、RNA降解
1.從動(dòng)物體取下的組織沒有立即進(jìn)行抽提或冰凍保存。
2.用于抽提的樣品，或抽提的RNA樣品保存于–5—–20°C，而不是存放于–70°C。
3.細(xì)胞經(jīng)消化而分散。
4.水溶液或試管污染有RNA酶。
5.用于瓊脂糖凝膠電泳的福爾馬林pH低于3.5。
6. RNA在水溶液中呈酸性，易自發(fā)水解，應(yīng)溶于TE，-20℃以下保存。?
五、DNA污染
1.樣品勻漿化時(shí)所加的TRIZOL量太少。
2.用于抽提的樣品包含有機(jī)溶媒（如乙醇，DMSO），強(qiáng)緩沖液或堿性溶液。
六、蛋白多糖和多糖污染
下述的對RNA沉淀方法改進(jìn)能從抽提的RNA中移去復(fù)合污染。以勻漿化時(shí)每1 ml TRIZOL為例，在水樣層中加入0.25 ml異丙醇后再加入0.25 ml的高鹽溶液（0.8 M檸檬酸鈉和1.2 M NaCl）。將終溶液混勻，離心并繼續(xù)進(jìn)行前述的抽提操作。改進(jìn)后的沉淀法能有效地析出RNA而多糖和蛋白多糖仍以可溶的的形式留在溶液中。對于含有大量多糖的植物，要抽提其RNA將改進(jìn)后的沉淀法和在zui初勻漿化時(shí)多加一次離心（RNA 抽提指南，可選方案）合并使用是十分必要的。
另外，關(guān)于實(shí)驗(yàn)所用的細(xì)胞，如果有新鮮的就用新鮮的，因?yàn)槭褂脙龃孢^的細(xì)胞實(shí)驗(yàn)結(jié)果會(huì)比較差。如果沒辦法馬上進(jìn)行RNA提取實(shí)驗(yàn)，建議先加入抽提試劑將樣品裂解之后在細(xì)胞凍存。
