一. 實驗原理：

SDS-PAGE是對蛋白質(zhì)進行量化，比較及特性鑒定的一種經(jīng)濟、快速、而且可重復的方法。該法是依據(jù)混合蛋白的分子量不同來進行分離的。

SDS是一種去垢劑，可與蛋白質(zhì)的疏水部分相結合，破壞其折疊結構，并使其廣泛存在于一個廣泛均一的溶液中。SDS蛋白質(zhì)復合物的長度與其分子量成正比。在樣品介質(zhì)和凝膠中加入強還原劑和去污劑后，電荷因素可被忽略。蛋白亞基的遷移率取決于亞基分子量。

二. 試劑和器材：

試劑：1. 5x樣品緩沖液（10ml）：0.6ml 1mol/L的Tris-HCl(pH6.8)，5ml 50％甘油，2ml 10％的SDS，0.5ml巰基乙醇，1ml 1％溴酚藍，0.9ml蒸餾水?？稍?℃保存數(shù)周，或在－20℃保存數(shù)月。

2. 凝膠貯液：在通風櫥中，稱取丙烯酰胺30g，甲叉雙丙烯酰胺0.8g，加重蒸水溶解后，定容到100ml。過濾后置棕色瓶中，4℃保存，一般可放置1個月。

3. pH8.9分離膠緩沖液： Tris 36.3g ，加1mol/L HCl 48ml，加重蒸水80ml使其溶解，調(diào)pH8.9，定容至100ml， 4℃保存。

4. pH6.7濃縮膠緩沖液： Tris 5.98g ，加1mol/L HCl 48ml，加重蒸水80ml使其溶解，調(diào)pH6.7，定容至100ml， 4℃保存。

5. TEMED（四乙基乙二胺）原液

6.10％過硫酸銨（用重蒸水新鮮配制）

7. pH8.3 Tris-*電極緩沖液：稱取Tris 6.0g，*28.8g，加蒸餾水約900ml，調(diào)pH8.3后，用蒸餾水定容至1000ml。置4℃保存，臨用前稀釋10倍。

8. 考馬斯亮藍G250染色液：稱100mg考馬斯亮藍G250，溶于200ml蒸餾水中，慢慢加入7.5ml 70％的過氯酸，zui后補足水到250ml，攪拌1小時，小孔濾紙過濾。

器材：電泳儀，電泳槽，水浴鍋，搖床。

三. 實驗操作；

1. 樣品制備

將蛋白質(zhì)樣品與5X樣品緩沖液（20ul＋5ul）在一個Eppendorf管中混合。放入100℃加熱5－10min，取上清點樣。

2. 分離膠及濃縮膠的制備

① 將玻璃板、樣品梳、Spacer用洗滌劑洗凈，用ddH₂O沖洗數(shù)次，再用乙醇擦拭，晾干；

② 將兩塊洗凈的玻璃板之間加入Spacer，按照Bio-Rad Mini Ⅱ/Ⅲ說明書提示裝好玻璃板；

③ 按如下體積配制10％分離膠8.0 ml，混勻：ddH₂O 3.0 ml；1.0 mol/LTris-HCl pH=8.8 2.1 ml；30％ Acr-Bis 2.8 ml；10％ SDS 80 ul；10％AP 56 ul；TEMED 6 ul。

④ 向玻璃板間灌制分離膠，立即覆一層重蒸水，大約20 min后膠即可聚合；

⑤ 按如下體積配制6％濃縮膠3.0 ml，混勻：ddH₂O 1.0 mol/LTris-HClpH=6.8 30％ Acr-Bis；2.0 ml 400 ul 600 ul；10％ SDS 10％ AP TEMED；36ul 24ul 4ul。

⑥ 將上層重蒸水傾去，濾紙吸干，灌制濃縮膠，插入樣品梳；

⑦ 裝好電泳系統(tǒng)，加入電極緩沖液，上樣20 μl；

⑧ 穩(wěn)壓200V，溴酚藍剛跑出分離膠時，停止電泳，約需45 min～1hr.

⑨ 卸下膠板，剝離膠放入染色液中，室溫染色1～2 hr；加入脫色液，置于80 rpm脫色搖床上,每20 min更換一次脫色液（10 ml 冰乙酸；45 ml乙醇；45 ml蒸餾水）至*脫凈。