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貨號 | 名稱 | 規(guī)格 |
SH0011 | 多酚氧化酶（polyphenol oxidase，PPO）檢測試劑盒（分光光度50T/24S） | 50管/24樣 |
正式測定前務必取2-3個預期差異較大的樣本做預測定
測定意義：
PPO（EC1.10.3.1）主要存在于動物、植物、微生物和培養(yǎng)細胞中，是一種含銅的氧化酶，能使一元酚和二元酚氧化產(chǎn)生醌，從而引起褐化，與果蔬加工、茶葉品質(zhì)和組培等密切相關。
測定原理：
PPO能夠催化鄰苯二酚產(chǎn)生醌，后者在525nm有特征光吸收。
組成：
產(chǎn)品名稱 | SH0011-50T/24S | Storage |
提取液：液體 | 60ml | 4℃ |
試劑一：液體 | 40ml | 4℃ |
試劑二：液體 | 10ml | 4℃ |
說明書 | 一份 | |
自備儀器和用品：
可見分光光度計、臺式離心機、水浴鍋、可調(diào)式移液器、1ml玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。
粗酶液提?。?/span>
1、細菌、細胞或組織樣品的制備：
細菌或培養(yǎng)細胞：先收集細菌或細胞到離心管內(nèi)，離心后棄上清；按照細菌或細胞數(shù)量（104個）：提取液體積（ml）為500~1000：1的比例（建議500萬細菌或細胞加入1ml提取液），超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率20％或200W，超聲3s，間隔10s，重復30次）；8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。
組織：按照組織質(zhì)量（g）：提取液體積(ml)為1：5~10的比例（建議稱取約0.1g組織，加入1ml提取液），進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。
2、血清（漿）或果汁樣本的處理：
按照血清（漿）或果汁體積（ml）：提取液體積(ml)為1：5~10的比例（建議取0.1ml血清（漿）或果汁加入1ml提取液），進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。
測定步驟：
1、 分光光度計預熱30min以上，調(diào)節(jié)波長至525nm，蒸餾水調(diào)零。
2、 樣本測定（在EP管中依次加入下列試劑）
試劑名稱（μl） | 測定管 | 對照管 |
樣本 | 180 | |
煮沸的樣本 | 180 | |
試劑一 | 720 | 720 |
試劑二 | 180 | |
蒸餾水 | 180 |
37℃(哺乳動物)或25℃（其它物種）中準確水浴10min后，95℃水浴5min充分混勻，10000g，25℃離心10min，取上清，525nm處檢測測定管和對照管吸光度。ΔA=A測定管-A對照管。
注意事項
煮沸樣本的操作：取300μl離心上清于EP管中，進行5min 95℃水浴處理；每個測定管需要設一個對照管，可以在不同對照管中加入不同樣品的粗酶液，然后集中進行5min 95℃水浴處理。
PPO活性計算：
1、血清（漿）或果汁PPO活性
單位的定義：每分鐘每ml血清（漿）或果汁在每ml反應體系中使525nm處吸光值變化
0.01為一個酶活力單位。
PPO（U/ml）=ΔA×V反總÷(V液× V樣÷V樣總)÷0.01÷T =60×ΔA÷V液
2、組織、細菌或細胞PPO活性
（1）按樣本蛋白濃度計算：
單位定義：每分鐘每mg組織蛋白在每ml反應體系中使525nm處吸光值變化0.01為一個
酶活力單位。
PPO（U/mg prot）=ΔA×V反總÷（V樣×Cpr）÷0.01÷T =60×ΔA÷Cpr
此法需要自行測定樣本蛋白質(zhì)濃度。
（2）按樣本鮮重計算：
單位定義：每分鐘每g組織在每ml反應體系中使525nm處吸光值變化0.01為一個
酶活力單位。
PPO（U/g 鮮重）=ΔA×V反總÷(W× V樣÷V樣總)÷0.01÷T =60×ΔA÷W
（3）按細菌或細胞密度計算：
單位定義：每分鐘每1萬個細菌或細胞在每ml反應體系中使525nm處吸光值變化0.01為一個酶活力單位。
PPO（U/104 cell）=ΔA×V反總÷(500×V樣÷V樣總)÷0.01÷T =0.12×ΔA
V反總：反應體系總體積，1.08ml；V液：加入血清（漿）或果汁體積，0.1ml；V樣：加入樣本體積，0.18ml；V樣總：加入提取液體積，1 ml；T：反應時間，10 min；Cpr：樣本蛋白質(zhì)濃度，mg/ml；W：樣本質(zhì)量，g；500：細胞或細菌總數(shù)，500萬。
