(一) 皮膚和粘膜的取材  
    皮膚和粘膜是上皮細(xì)胞培養(yǎng)的重要組織來源，主要取自于手術(shù)過程中的皮片，方法似外科取斷層皮片手術(shù)操作，但面積一般2~4cm2即可，這樣局部*heng，若對(duì)燒傷皮膚進(jìn)行上皮細(xì)胞膜片移植，可從大腿或臀部取較大皮片，可取2~4cm2皮片，但取材時(shí)不要用碘酒消毒；若培養(yǎng)上皮細(xì)胞，取材時(shí)不要切取太厚，盡可能去除所攜帶的皮下或粘膜下組織；若欲培養(yǎng)成纖維細(xì)胞，則反之。皮膚粘膜與外界相通部位，因表面細(xì)菌、霉菌很多，取材時(shí)應(yīng)嚴(yán)格消毒，必要時(shí)要用高濃度抗菌素和適量兩性霉素B漂洗、浸泡。  
(二)內(nèi)臟和實(shí)體瘤的取材  
    內(nèi)臟除消化道外基本是無菌的，但取材時(shí)要明確和熟悉所需組織的類型和部位，實(shí)體瘤取材時(shí)要取腫瘤細(xì)胞豐富的區(qū)域，要避開破潰、壞死液化部分，以防污染，盡量去除混雜的結(jié)締組織，否則培養(yǎng)后，由于成纖維細(xì)胞的生長給以后的培養(yǎng)工作增加困難。

(三)血液細(xì)胞的取材  
血液及淋巴組織中的血細(xì)胞、淋巴細(xì)胞的取材，一般多抽取靜脈外周血，或從淋巴組織中（如脾、扁桃體、胸腺、淋巴結(jié)等）分離細(xì)胞，取材時(shí)應(yīng)注意抗凝，通常采用肝素抗凝，常用肝素濃度為8~10u/mL血，抽血的針筒也要用肝素濕潤，若從血站取來的獻(xiàn)血員的血液，因血站不用肝素抗凝劑，常用含枸椽酸鹽抗凝，對(duì)此類血標(biāo)本千萬不能用含鈣、鎂離子的洗液來處理細(xì)胞，因此時(shí)的鈣、鎂離子可加速血液中凝血酶促進(jìn)血液凝固而影響收獲血細(xì)胞及淋巴細(xì)胞。此外要嚴(yán)格無菌，盡量新鮮使用。  
(四)骨髓、羊水、胸/腹水細(xì)胞取材  
    取上述標(biāo)本時(shí)，除嚴(yán)格無菌，注意抗凝外，還要盡快分離培養(yǎng)，一般無需其他處理，離心后，用無鈣、鎂PBS洗兩次，再用培養(yǎng)液洗一次后即可培養(yǎng)，不宜低溫存放。

(五)動(dòng)物組織取材  
1、鼠胚組織取材  
    首先用引頸或氣管窒息致死法處死孕期合適的動(dòng)物，然后將其整個(gè)浸泡在含有75%酒精的燒杯中，5分鐘后（注意時(shí)間不能太長，以避免酒精從口或其他通道進(jìn)入體內(nèi)，影響組織活力），取出動(dòng)物，在消毒過的木板上可用無菌的圖釘或大頭針固定四肢，切開皮膚，用無菌操作法解剖取胚或用無菌止血鉗挾起皮膚、用無菌眼科剪沿軀干中部環(huán)形剪開皮膚，用止血鉗分別挾住兩側(cè)皮膚拉向頭尾，把動(dòng)物反包，暴露軀干，然后再固定，更換無菌解剖器材，采用無菌操作法解剖取出胚胎。  
2、幼鼠胚腎（或肺）取材  
    幼鼠采用上述方法處死消毒后，腹部朝上固定在木板上，先切開游離毛皮并拉開至兩側(cè)：然后采用無菌法打開胸腔取肺，或背部朝上固定在木板上，先將背部毛皮切開游離并拉向兩側(cè)，然后采用無菌法從背部打開腹腔取腎。  
(六)人胚體組織取材  
    在局部先用碘酒后用75%酒精棉球消毒，無菌法取人胚肺（腎），方法與鼠類相同。  
(七)雞（鴨）鳥類胚胎組織取材  
    取孵化至適當(dāng)胚齡（9~12天）的胚蛋，用照蛋燈在暗處燈檢，若有豐富血管、胚體有運(yùn)動(dòng)的胚蛋，說明胚體發(fā)育良好，并用有色筆劃出氣室和胚體位置。將胚蛋置于蛋架上，先用溫水清洗蛋殼，再用75%酒精棉球擦干，經(jīng)碘酒、75%酒精消毒后，在無菌條件下采用無菌法用剪刀或中號(hào)鑷子打開氣室，沿氣室邊緣去除蛋殼，再用眼科鑷撕去殼膜，暴露出雞胚，再用彎頭鑷輕挑起胚頭，取出胚胎，放入無菌平皿中，解剖取材。