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實驗原理
考馬斯亮藍（Coomassie Brilliant Blue）法測定蛋白質(zhì)濃度，是利用蛋白質(zhì)―染料結合的原理，定量的測定微量蛋白濃度的快速、靈敏的方法。這種蛋白質(zhì)測定法具有超過其他幾種方法的突出優(yōu)點，因而正在得到廣泛的應用。這一方法是目前靈敏度zui高的蛋白質(zhì)測定法。
考馬斯亮蘭G-250染料，在酸性溶液中與蛋白質(zhì)結合，使染料的zui大吸收峰（lmax）的位置，由465nm變?yōu)?595nm，溶液的顏色也由棕黑色變?yōu)樘m色。通過測定595nm處光吸收的增加量可知與其結合蛋白質(zhì)的量。研究發(fā)現(xiàn)，染料主要是與蛋白質(zhì)中的堿性氨基酸（特別是精氨酸）和芳香族氨基酸殘基相結合。
考馬斯亮藍染色法的突出優(yōu)點是：
（1）靈敏度高，據(jù)估計比Lowry法約高四倍，其zui低蛋白質(zhì)檢測量可達1mg。這是因為蛋白質(zhì)與染料結合后產(chǎn)生的顏色變化很大，蛋白質(zhì)－染料復合物有更高的消光系數(shù)，因而光吸收值隨蛋白質(zhì)濃度的變化比Lowry法要大的多。
（2）測定快速、簡便，只需加一種試劑。完成一個樣品的測定，只需要5分鐘左右。由于染料與蛋白質(zhì)結合的過程，大約只要2分鐘即可完成，其顏色可以在1小時內(nèi)保持穩(wěn)定，且在5分鐘至20分鐘之間，顏色的穩(wěn)定性。因而*不用像Lowry法那樣費時和嚴格地控制時間。
（3）干擾物質(zhì)少。如干擾Lowry法的K+、Na+、Mg2+離子、Tris緩沖液、糖和蔗糖、甘油、巰基乙醇、EDTA等均不干擾此測定法。
此法的缺點是：
（1）由于各種蛋白質(zhì)中的精氨酸和芳香族氨基酸的含量不同，因此考馬斯亮藍染色法用于不同蛋白質(zhì)測定時有較大的偏差，在制作標準曲線時通常選用g—球蛋白為標準蛋白質(zhì)，以減少這方面的偏差。
（2）仍有一些物質(zhì)干擾此法的測定，主要的干擾物質(zhì)有：去污劑、 Triton X-100、十二烷基硫酸鈉（SDS）等。
試劑與器材
一、試劑
考馬斯亮藍試劑：
考馬斯亮藍G―250 100mg溶于50mL 95%乙醇中，加入100mL 85%磷酸，用蒸餾水稀釋至1000mL。
二、標準和待測蛋白質(zhì)溶液
1．標準蛋白質(zhì)溶液
結晶牛血清蛋白，預先經(jīng)微量凱氏定氮法測定蛋白氮含量，根據(jù)其純度用0.15mol/L NaCl配制成1mg/mL蛋白溶液。
2．待測蛋白質(zhì)溶液。
人血清，使用前用0.15mol/L NaCl稀釋200倍。
三、器材
試管1.5×15cm（×6），試管架，移液管管0.5mL（×2）；1mL（×2）；5mL（×1）；恒溫
水浴；分光光度計。
操作方法
一、制作標準曲線
取7支試管，按下表平行操作。
| 試管編號 | 0 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 |
| 標準蛋白溶液（mL） | 0 | 0.01 | 0.02 | 0.03 | 0.04 | 0.05 | 0.06 |
| 0.15mol/L NaCl（mL） | 0.1 | 0.09 | 0.08 | 0.07 | 0.06 | 0.05 | 0.04 |
| 考馬斯亮藍試劑（mL） | 5mL | ||||||
| 搖勻，1h內(nèi)以0號管為空白對照，在595nm處比色 | |||||||
| A595nm |
| ||||||
繪制標準曲線：以A595nm為縱坐標，標準蛋白含量為橫坐標，在坐標紙上繪制標準曲線。
二、未知樣品蛋白質(zhì)濃度測定
測定方法同上，取合適的未知樣品體積，使其測定值在標準曲線的直線范圍內(nèi)。根據(jù)所測定的A595nm值，在標準曲線上查出其相當于標準蛋白的量，從而計算出未知樣品的蛋白質(zhì)濃度（mg/mL）。
注意事項
- 在試劑加入后的5－20min內(nèi)測定光吸收，因為在這段時間內(nèi)顏色是zui穩(wěn)定的。
- 測定中，蛋白－染料復合物會有少部分吸附于比色杯壁上，測定完后可用乙醇將藍色的比色杯洗干
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