原代細(xì)胞

原代細(xì)胞傳代方法：

一、貼壁細(xì)胞的消化法傳代

1、吸除或倒掉瓶?jī)?nèi)舊培養(yǎng)液。

2、加入1ml左右消化液（胰蛋白酶或與EDTA混合液）輕輕搖動(dòng)培養(yǎng)瓶，使瓶底細(xì)胞都浸入溶液中。

3、消化2-5分鐘后把培養(yǎng)瓶放置在顯微鏡下進(jìn)行觀察，發(fā)現(xiàn)原貼壁的細(xì)胞逐漸趨于圓形，在還未漂起時(shí)，棄去消化液，加入培養(yǎng)液終止消化。

4、用吸管將貼壁的細(xì)胞吹打成懸液，分別接種到另外兩到三個(gè)培養(yǎng)瓶中，置37℃培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)。第二天觀察貼壁生長(zhǎng)情況。

二、懸浮細(xì)胞的傳代

1、直接傳代

1）讓懸浮細(xì)胞慢慢沉淀在瓶底后，將上清吸掉1/2-2/3。

2）用吸管吹打形成細(xì)胞懸液后，分別接種到另外兩到三個(gè)培養(yǎng)瓶中，置37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

2、離心法傳代

1）將細(xì)胞連同培養(yǎng)液一并轉(zhuǎn)移到離心管內(nèi)，離心800-1000rpm，5分鐘。

2）去除上清，加新的培養(yǎng)液一離心管內(nèi)，用吸管吹打使之形成細(xì)胞懸液。

3）將細(xì)胞懸液分別接種到另外兩到三個(gè)培養(yǎng)瓶中，置37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

原代細(xì)胞培養(yǎng)中的6個(gè)常見錯(cuò)誤

錯(cuò)誤＃1：一小管原代細(xì)胞在水浴中解凍一段時(shí)間

糾正＃1：原代細(xì)胞對(duì)解凍過程非常敏感，因此將小瓶置于37℃水浴中，保持并輕輕旋轉(zhuǎn)直到內(nèi)容物剛剛解凍是很重要的。然后應(yīng)立即從水浴中取出小瓶，并轉(zhuǎn)移到無菌操作臺(tái)。確保您的培養(yǎng)瓶在解凍前已經(jīng)準(zhǔn)備就緒，以便可以立即用于接種細(xì)胞，并置于培養(yǎng)箱中。

錯(cuò)誤＃2：解凍小瓶后直接離心原代細(xì)胞

糾正＃2：我們不建議在解凍后離心細(xì)胞，因?yàn)殡x心程序比少量的DMSO殘留更有害。記住，在恢復(fù)原代細(xì)胞后的第二天更換培養(yǎng)基以去除任何殘留的DMSO。

錯(cuò)誤＃3：允許原代細(xì)胞變得過于融合

糾正＃3：當(dāng)生長(zhǎng)至100匯合時(shí)，原代細(xì)胞可以變得衰老。記住，原代細(xì)胞不是100純，因此重要的是盡量減少污染細(xì)胞的生長(zhǎng)。我們建議在細(xì)胞達(dá)到90-95％融合時(shí)，對(duì)原代細(xì)胞進(jìn)行傳代培養(yǎng)。

錯(cuò)誤＃4：傳代原代細(xì)胞時(shí)過度胰蛋白酶消化

糾正＃4：當(dāng)細(xì)胞傳代時(shí)，使用低濃度的胰蛋白酶并在顯微鏡下密切監(jiān)測(cè)細(xì)胞。此外，記得在胰蛋白酶消化后*中和細(xì)胞中的胰酶，因?yàn)槿魏位钚缘囊鹊鞍酌付紝p傷細(xì)胞。我們特別推薦專門為原代細(xì)胞配制的胰蛋白酶中和溶液，但也可以使用10％血清或大豆胰蛋白酶抑制劑。

錯(cuò)誤＃5：原代細(xì)胞可以很容易地重新凍存

糾正＃5：通常我們不推薦重新凍存原代細(xì)胞，因?yàn)檫@可以促進(jìn)細(xì)胞衰老和/或?qū)е鹿δ茏兓Ｔ?xì)胞非常敏感，重新凍結(jié)可能導(dǎo)致細(xì)胞死亡或損傷。

錯(cuò)誤6：原代細(xì)胞可以無限的增殖

糾正＃6：與細(xì)胞系不同，原代細(xì)胞具有有限的擴(kuò)增能力。我們建議盡早使用原代細(xì)胞進(jìn)行實(shí)驗(yàn)以防止遺傳漂移。此外，如果你正在使用一個(gè)增值困難的細(xì)胞類型，你應(yīng)該密切監(jiān)測(cè)細(xì)胞形態(tài)，因?yàn)樯倭炕祀s的細(xì)胞（如成纖維細(xì)胞）可能隨著時(shí)間的推移，大量生長(zhǎng)從而成為主要細(xì)胞。