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雙酶切連接轉(zhuǎn)化反應(yīng)之全攻略

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1、回收PCR產(chǎn)物:在進行pcr擴增時候,給引物兩端設(shè)計好酶切位點,一般說來,限制酶的 選擇非常重要,盡量選擇粘端酶切和 那些酶切效率高的限制酶,如BamHI,HindIII,提前看好各公司的雙切酶所用公用的BUFFER,以及各酶在公用BUFFER里的效率。選好酶切位點后,在各個酶的兩邊加上保護堿基,其原則可參照:http://img.dxy.cn/upload/2006/08/13/31219184.pdf。

雙酶切時間及其體系:需要強調(diào)的是很多人建議酶切過夜,其實*沒有必要,我一般酶切3個小時,其實1個小時已經(jīng)足夠。應(yīng)用大體系,如100微升。

純化問題:純化PCR產(chǎn)物割膠還是柱式,我柱式,因為割膠手法不準,很容易割下大塊的膠,影響純化效率。現(xiàn)在的柱式純化號稱可以祛除引物,既然如此,酶切掉的幾個堿基肯定也會被純化掉了。所以,PCR產(chǎn)物和雙酶切產(chǎn)物的純化均可應(yīng)用柱式純化。我用的是TaKaRa的純化柱試劑盒

酶量的問題:以TAKARA的為例,其對1單位酶的定義如下:在50 μl 反應(yīng)液中,30℃溫度下反應(yīng)1小時,將1 μg 的λDNA*分解的酶量定義為1個活性單位(U)。 而該酶濃度約為15單位/微升,在除外酶降解的 因素外,該酶可分解15μg的DNA,而一般從1-4ml菌液提出的 DNA約為3μg,而PCR純化后的產(chǎn)物(50體系)約為3μg,所以即便全部加進去,只要純化的 質(zhì)量好,酶切*切得動。

2、酶切、回收后的PCR產(chǎn)物與載體的連接

摩爾比的計算,很多人憑經(jīng)驗也可以。但對于初學者從頭認真計算則 非常有必要?;厥盏妮d體片段:回收的PCR產(chǎn)物片段=1:10 ,一般取前者0.03pmol,后者取0.3pmol。

pmol為單位的DNA轉(zhuǎn)換為為µg單位的DNA:(X pmoles×長度bp×650)/ 1,000,000 (注:長度bp×650是該雙鏈DNA的分子量)所得數(shù)值即為µg,也可以直接用這個公式套.1pmol 1000bp DNA=0.66μg,如載體是5380bp,則0.03pmol為

0.03×5.38×0.66=0.106524µg。

測DNA濃度可以在機子上測,注意OD值,一般約1.8-2.0.另外,如果嫌麻煩,也可用MARKER進行估測,如MARKER2000,5微升的 MARKER每個條帶約50ng。

連接反應(yīng):TAKARA的 連接酶上的 說明寫的過夜,而其對連接酶單位的定義為:在20 μl的連接反應(yīng)體系中,6 μg的λDNA-Hind III的分解物在16℃下反應(yīng)30分鐘時,有90%以上的DNA片段被連接所需要的酶量定義為1個活性單位(U)。而它的濃度為350 U/μl ,所以*夠用。連接酶容易失活,注意低溫操作,在冰上。時間3個小時足已。

3、轉(zhuǎn)化:

a、全量(10 μl)加入至100 μl JM109感受態(tài)細胞中,冰中放置30分鐘。

b、42℃加熱45秒鐘后,再在冰中放置1分鐘。

c、加入890 μl AMP陰性培養(yǎng)基,37℃振蕩培養(yǎng)60分鐘。

取100μl鋪板。也可離心后余100μl

幾個非常重要的問題

1 做轉(zhuǎn)化的時候,進行酶連接反應(yīng)時,注意保持低溫狀態(tài),因為LIGASE酶很容易降解.為保險起見,一般連接3小時,16度.

2 對含有AMP-RESISTENCE的質(zhì)粒鋪板時,注意加AMP時的溫度,溫度過高,會使克隆株無法篩選出來.我的方法是培基高溫消毒后放在烤箱里,烤箱一般溫度為55-60度,然后做的時候拿出來,這樣好掌握溫度。鋪板前后注意用吹風機吹干

3對照的設(shè)立:

為驗證雙酶切是否成功,可做如下對照:

A 酶切反應(yīng)時加各單酶分別切,兩管,用同一種BUFFER,跑膠,看單切的兩管是否成線性.如兩管均成線性可初步判斷雙酶切成功.

做轉(zhuǎn)化時,也要進行對照.

設(shè)4個:

A.即拿雙酶切的質(zhì)粒產(chǎn)物也進行連接反應(yīng),這個對照可進一步看雙酶切是否成功,如果長出克隆,說明很有可能只進行了單酶切,如沒長出克隆,則證明雙酶切成功,當然要保證感受態(tài),培基,連接酶都'正常'的情況下.

B.酶切過的未進行連接反應(yīng)的雙酶切產(chǎn)物,進行轉(zhuǎn)化,這一步可以證明是否有殘留的未被任何酶切的原始質(zhì)粒

C.設(shè)原始質(zhì)粒為對照,意為檢測整個操作過程中是否有誤.

D.AMP陰性板上用同一批感受態(tài)細胞鋪板20微升足夠,檢測感受態(tài)狀況.

4.所有的試劑切記低溫保存.一步一個腳印.不要偷懶,圖省事zui后卻更費事.注意設(shè)立對照。

經(jīng)PCR鑒定,克隆90%-的陽性率,所以在后面的 挑克隆中,我只挑選4個就足夠了。然后雙酶切鑒定,測序。。。。。。

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