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一、肺纖維化背景簡介
肺纖維化(pulmonary fibrosis,PF)是肺組織異常修復造成不可逆損傷的一類疾病,以炎癥和細胞外基質沉積為特征,呈進展性和致死性的彌漫性肺間質疾病,其中,特發(fā)性肺間質纖維化(idiopathic pulmonary fibrosis,IPF)發(fā)病率。
二、肺纖維化大小鼠模型構建簡介
構建一個理想的肺纖維化模型,不僅有助于進一步篩選肺纖維化生物標志物,同時也為深入研究肺纖維化發(fā)病機制及動物臨床治療肺纖維化和研發(fā)新藥提供科學基礎。
三、肺纖維化大小鼠模型構建方法
1. 實驗動物
大小鼠
2. 實驗材料
blms,注射器
3. blms誘導模型制備流程
(1)小鼠按照麻醉劑劑量麻醉后固定,呈仰臥位姿勢,氣管居中,暴露頸部,剪毛備皮,無水乙醇消毒后沿頸部中線開口(開口大小:0.5-1cm左右)緩慢鈍性分離至氣管,此時需要輕柔操作,減少因手術操作造成的氣管損傷。
(2)使用注射器(1ml或者微量注射器,胰島素針不失為好的選擇),針頭幾乎平行于氣管平面,經氣管軟骨環(huán)間隙朝向心端插入氣管內,回抽無阻力,則注入少量的blms溶液(不超過0.2 ml/只,肺內大量積液會導致動物的死亡)。
(3)注射完畢后,縫合傷口,后將動物直立1-3 min,適度左右轉動,并輕輕按摩小鼠胸部,保證blms在肺內均勻分布,動物清醒后常規(guī)飼養(yǎng)。(3天左右即可出現損傷,體重降低等癥狀)28d后收集樣本。
特發(fā)性:
1. 選用SD大鼠或C57小鼠,通過blms(5mg/kg)或者脂多糖(5mg/kg)氣管內給藥,建立特發(fā)性肺纖維化模型。
2. 麻醉動物,仰臥固定于實驗臺上。
3. 頸部去毛后碘伏消毒,切開皮膚,逐層暴露氣管。
4. 將微量注射器經兩氣管軟骨環(huán)間隙朝向心端刺入氣管,回抽無阻力后,注入LPS溶液或者BLM溶液。
5. 手術完畢后迅速將動物直立、旋轉,使藥液在肺內分布均勻。
6. 動物清醒后常規(guī)飼養(yǎng),注意術后護理,成模周期一般在6個月左右
4.模型鑒定
4.1 HE染色觀察肺組織肺泡炎程度
肺組織肺泡炎評分:無肺泡炎計1 分,輕、中、重度肺泡炎分別計2、3、4 分。輕度肺泡炎主要表現為單核細胞浸潤,肺泡間隔增寬但結構正常,浸潤局限于近胸膜部,受累面積小于全肺的20 %;中度肺泡炎受累面積占全肺20 % ~ 50 %;重度肺泡炎受累面積占全肺的50 % 以上,偶見肺泡腔內有單核細胞及出血造成實變。
4.2 Masson染色觀察肺組織肺纖維化程度
肺纖維化程度評分:無纖維化計1 分,輕、中、重度肺纖維分別計2、3、4 分。輕度纖維化主要累及胸膜及胸膜下肺間質,肺泡結構紊亂,受累面積小于20 %;中度纖維化受累面積占全肺的20 %~50 %;重度纖維化受累面積占全肺的50 % 以上,肺實質紊亂,并有融合,可見大小不等的囊氣腔。
四、小結
在PE動物模型中,BLM造模可行性好,研究性強,能夠重視一般PE,其用于IPE發(fā)病機制的研究和有效治療藥物的研發(fā)具有很大的實用價值。但是BPF動物模型與臨床IPE相比仍存有一定差異,在實驗研究應用方面也有一定局限性,因此需加強對BLM作用機制及IPE的研究,進一步明確其相關性。
五、參考文獻
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