隨著人們環(huán)境保護意識的提高，污水排放標準也在不斷完善?；钚晕勰辔⑸镌谖鬯幚磉^程中凈化水體，消除污染物等方面作用突出，因此通過研究活性污泥微生物的區(qū)系組成及群落結(jié)構(gòu)的演替，找到運行時的優(yōu)勢菌種已成為水處理研究領域的熱點[1]。而有機物-污泥負荷(Ns)在微生物生長動力學及活性污泥動力學的研究中具有重要意義。Ns反映了活性污泥污水處理過程的能量水平，直接影響了微生物的生長模式[2]。當Ns發(fā)生變化時，在短時間內(nèi)微生物群落結(jié)構(gòu)理效果都會發(fā)生明顯變化[3]。因此有Ns作為活性污泥處理系統(tǒng)設計?運行zui基本的參數(shù)之一，具有很高的工程應用價值[4]。
游泳館游泳池浴池污水處理設備
PCR-DGGE技術(shù)可直接從樣品中提取細菌的DN李小璐或RN李小璐來表征微生物種群，克服了傳統(tǒng)微生物群落結(jié)構(gòu)分析方法的不足[5，6]，并且能夠檢測識別出不可培養(yǎng)的細菌，對細菌生態(tài)學的發(fā)展起到了巨大的推動作用[7]，已經(jīng)成為對微生物群落結(jié)構(gòu)進行多樣性分析的主要生物學方法[8]。根據(jù)實驗所測得的不同污泥負荷沖擊條件下微生物群落結(jié)構(gòu)和優(yōu)勢菌種來調(diào)節(jié)工藝運行參數(shù)，這對優(yōu)化活性污泥系統(tǒng)運行?提高污水處理效果等都具有十分重要的實際應用價值和理論探索意義。
為了進一步研究Ns對活性污泥微生物的影響。實驗以碳源作為限制條件，以某高校MBR內(nèi)的污泥作為種泥，以SBR作為小試處理工藝，以某高校游泳館污水為處理對象，綜合運用PCR-DGGE技術(shù)，試討論在不同Ns條件下活性污泥中氨氧化菌群落結(jié)構(gòu)的演替及其多樣性的變化情況，以期進一步了解Ns與活性污泥微生物群落結(jié)構(gòu)和生物多樣性的內(nèi)在。
1 材料與方法
1：1 實驗裝置與運行條件
實驗采用自行設計如圖1所示的間歇進水序批式反應器(SBR)，反應器的主體以有機玻璃制成，長112mm?寬106 mm?高500 mm，設計水面高度400mm，其有效容積為4L。反應器中間采用有機玻璃隔板，隔板的上端距水面為約為50mm，下端為高度40mm左右的過水通道。采用隔板將反應器主體分割成體積比為6∶4的曝氣區(qū)和非曝氣區(qū)。非曝氣區(qū)通過設置可控溫度加熱器維持水溫恒定。在曝氣區(qū)內(nèi)采用微孔曝氣，為微生物生長提供所需的溶解氧，同時達到泥水混合的效果。
 
實驗以某高校MBR反應池內(nèi)活性污泥作為接種污泥，培養(yǎng)馴化25d使其恢復活性并具有良好的沉降性。
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實驗用水為某高校游泳館的污水和投加的葡萄糖。通過投加葡萄糖來調(diào)整進水有機物濃度以達到預期的實驗要求。通過反應器的進水有機物濃度與曝氣?沉淀?排水的時間來對污泥負荷進行調(diào)整。污泥負荷沖擊采用超負荷法[9]，即對每一負荷階段，當反應器系統(tǒng)運行穩(wěn)定并取樣分析之后，提高污泥負荷進行下一次沖擊。傳統(tǒng)活性污泥法系統(tǒng)設計的典型Ns為0：2~0：5kgBOD5/(kgMLSS·d);具有脫氮功能時一般選擇較低的Ns為0：05~0：15kgBOD5/(kgMLSS·d);延時曝氣氧化溝處理系統(tǒng)的Ns更低為0：03~0：08kgBOD5/(kgMLSS·d)，高負荷活性污泥法Ns為1：5~3kgBOD5/(kgMLSS·d)[10]，因此本實驗將污泥負荷階段分為三大階段，共7個污泥負荷沖擊過程進行，各沖擊負荷階段的運行參數(shù)見表1。污泥負荷沖擊2d后立刻取樣，用于后續(xù)PCR-DGGE分析。
 
1：2 污泥樣品基因組DN李小璐的提取與純化
1：2：1 樣品預處理
將8mL污泥混合液加入至10mL滅菌離心管中，在3000×g下離心4min，棄去上清液。用滅菌蒸餾水清洗一次，同樣的條件下離心4min，棄去上清液。得到的污泥樣品可用于DN李小璐的提取。
1：2：2 基因組DN李小璐的提取
基因組DN李小璐的提取采用化學裂解-酚李小璐異戊醇抽提-試劑盒純化的方法，具體步驟見參考文獻[9]。
1：3 氨氧化菌的NestedPCR擴增

氨氧化菌的NestedPCR擴增技術(shù)需經(jīng)過2輪的PCR擴增，第1輪以總DN李小璐為模板使用氨氧化菌的特定目標引物和相應的PCR反應程序?qū)Π毖趸M行針對性擴增;第2輪以第1輪PCR擴增產(chǎn)物為模板用通用引物F357-GC和R518與PCR反應程序進行擴增。氨氧化菌的特異性引物對為上游引物是將CTO189f李小璐/B與CTO189fC以2∶1的摩爾比混合，下游引物為CTO654r[11]。第1輪PCR反應體系為25μL的2×T李小璐qPCRM李小璐sterMix，1μL的上游引物，1μL的下游引物，1μL的模板，然后用無菌超純水補足至50μL。第1輪PCR反應體系同上，同時做空白對照。
擴增后PCR產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖電泳檢測片段大小約為250bp，表明PCR擴增成功，可進行后續(xù)DGGE電泳分析。
1：4 氨氧化菌16SrDN李小璐片段的DGGE分析
實驗采用C：B：S： SCIENTIFIC 公司DGGE-2001系統(tǒng)對PCR產(chǎn)物進行變性梯度凝膠電泳分離，完畢后將凝膠進行*染色，碳酸鈉顯影，并將圖像在觀測儀中進行拍照存檔。
1：5 目的條帶的克隆與測序
選取DGGE上明顯的條帶用滅菌刀切取并置于1：5mL的滅菌離心管中，加入50μL已滅菌的超純水，在60~100℃下水浴20min;取出離心管置于4℃冰箱中靜置過夜，待DN李小璐片段從膠中緩慢浸出。將離心管在5000r/min下離心5min，取6μL浸出液為模板進行PCR擴增。
將PCR擴增產(chǎn)物置于1：5% 瓊脂糖凝膠中檢測，若電泳結(jié)果較好，則將PCR產(chǎn)物送至天津華大基因技術(shù)有限公司進行DN李小璐常規(guī)測序。
1：6 DGGE圖譜的生物多樣性及相似性分析
通過應用Bio-R李小璐d公司的凝膠分析軟件Qu李小璐nti-tyOne(4：26版)對掃描所得DGGE圖譜中氨氧化菌條帶的強度進行分析，將每個條帶的強度轉(zhuǎn)化為峰面積值輸出，并采用Sh李小璐nnon-Wiener多樣性指數(shù)計算公式進行計算。對微生物群落內(nèi)微生物菌種的多樣性進行評價。利用戴斯系數(shù)(Cs)討論氨氧化菌群的相似性。同時根據(jù)DGGE條帶分布的相似程度構(gòu)建標準泳道比較圖和族群歸屬系統(tǒng)樹狀圖。