elisa試劑盒實驗-如何選擇*化的包被條件？ 

1.包被抗原的選擇 
包被抗原可分為天然蛋白、重組蛋白和小分子抗原三大類.天然蛋白需經純化才能用直接吸附法包被,對于含雜質較多的抗原可以采用間接捕獲法包被(先用能夠與目的抗原反應的物質如抗體直接吸附在酶標板上,再通過特異性反應使抗原固相化).經純化的重組蛋白一般皆可直接包板.小分子抗原比如多肽以及一些小分子有機化合物,由于分子量太小,往往難于直接吸附在酶標板上,一般都先使其與無關蛋白質如BSA等偶聯,偶聯物吸附于固相載體上. 

2.包被液的選擇 
一般常用的是pH9.6的碳酸鹽緩沖液,如果包被的抗原在堿性條件下不穩(wěn)定的話,也可以使用pH7.2的磷酸鹽緩沖液. 

3.包被溫度的選擇 
通常是4-8度條件下過夜或者37度保溫2小時,我們強烈建議4-8度條件下包被,有利于蛋白活性的保持. 

4.包被濃度的選擇 
包被的zui適濃度隨固相載體和包被物的性質變化,一般蛋白質的包被濃度為1-5ug/ml,要明確針對特定包被抗原的zui適包被濃度需要通過實驗來確定. 

包板后需要封閉嗎？應該選擇什么樣的封閉體系？ 
封閉是否必要,取決于ELISA的模式及具體的實驗條件.一般說來,雙抗體夾心法,只要酶標記物是高活性的,操作時洗滌*,不經封閉也可得到滿意的結果.而在間接法測定中,封閉一般是*的.
常用的封閉劑有0.05%-0.5%的BSA、10%的小牛血清、1%明膠、5%的脫脂奶粉,AbMART*使用5%脫脂奶粉,價廉而且封閉能力強,不過5%脫脂奶粉只適合短期內使用,不宜*保存,所以試劑盒中較少使用.