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細胞培養(yǎng)面面觀

閱讀:487發(fā)布時間:2017-6-23

細胞培養(yǎng)面面觀
1、首先說清洗:對于玻璃器皿(如移液管、蓋玻片之類)可先用酸液浸泡24h以上,再用清水浸泡24h。之后用清水將移液管沖洗10遍,除去殘留酸液,再用雙蒸水沖洗3-5遍,*洗凈后放入不銹鋼筒中,雙層牛皮紙扎口,高壓滅菌20min,烘干待用。我們實驗室的酸液一般是次強酸液(重鉻酸鉀120g 濃硫酸200 mL 蒸餾水1 000 mL)配液時要小心燙傷。裝培養(yǎng)基的瓶子則要在每次用完培養(yǎng)基以后就要立即洗凈,臨用時再次用清水沖洗3-5遍,再用雙蒸水漂洗3次,洗凈后瓶口蓋上錫箔紙,外包雙層牛皮紙扎口后高壓滅菌20min,與其配套的瓶蓋則洗凈后另行包好同時滅菌、烘干。培養(yǎng)基過濾器滅菌同瓶子,也要在用完后及時洗凈、滅菌時保持密封。Tip頭就容易了,插到盒子里,雙層牛皮紙包好后直接高壓滅菌就好了。

2、再說說除菌:我說的除菌主要是指溶液的除菌。如PBS、HEPES之類的一些緩沖劑和不含葡萄糖的鹽溶液,可以配好以后直接高壓滅菌。而大部分的溶液由于成分限制必須過濾除菌。我們實驗室需要過濾除菌的溶液有:膠原酶、胰酶、各類血清、抗生素、G-418溶液、各類培養(yǎng)基、各類生長因子、丙酮酸鈉、谷氨酰胺等。

3、關(guān)于各類溶液的配制:我列出我們實驗室常用試劑的配方

1XPBS:氯化鈉8克、0.2克、磷酸二氫鈉1.15克、磷酸氫二鉀0.2克,加水至一升,調(diào)pH=7.4。這里我認為PBS的pH是zui重要的一環(huán),不可大意。

HEPES溶液:8克氯化鈉、0.3克、0.135克磷酸氫二鈉、1克葡萄糖、5克HEPES加水900ml,調(diào)pH=7.4
抗生素:我們主要用青霉素和鏈霉素,一般用1XPBS稀釋至1X105單位,-20度儲存,用時直接加入培養(yǎng)基,工作濃度一般為1X102單位。
G-418:1克包裝的G-418瓶中加入10mlHEPES溶液*溶解,過濾除菌后分裝于EP管,-20度保存。
谷氨酰胺:L-谷氨酰胺29.2克,加Hanks‘BBS1000ml溶解,配成200mmol/L過濾除菌,4度保存,工作濃度1~4mmol/L。加有谷氨酰胺的培養(yǎng)液在4℃冰箱中儲存2周以上時,應(yīng)重新加入原來的谷氨酰胺。
1XEDTA-胰酶:0.25克胰酶加0.1克EDTA*溶解于500ml 1XPBS中,過濾除菌后分裝于50ml離心管中,一管4度備用,其他-20度保存。我不太主張配成10X的母液,因為胰酶反復(fù)凍融后,效果會差很多。(EDTA很難溶,必要時候可放置過夜)
MTT:sigma公司出產(chǎn),用1XPBS配成50mg/ml待用。MTT毒性很大,配置時務(wù)必小心。
各類培養(yǎng)基:現(xiàn)在我們實驗室都是買GIBICO的粉劑自己配制。包裝盒上會有配制方法,以及加碳酸氫鈉的量。按說明來就是了。需要注意的是在配培養(yǎng)基前,先確保碳酸氫鈉充分溶解,避免局部pH偏高或偏低。SmileSmile
再一個就是水的使用,一般配鹽溶液,用三蒸水即可,而配制培養(yǎng)基務(wù)*超純水,并在使用前要高壓滅菌。

4、關(guān)于培養(yǎng)基的選用:我養(yǎng)過的細胞株不多,權(quán)當(dāng)拋磚引玉吧。
一般來說大部分細胞系我們都用高糖DMEM+10%FCS培養(yǎng),我們實驗室用該培養(yǎng)基的有:HepG-2、NIH-3T3、A549、Hela、C2C12、COS-7。特殊的,如P19Cl6用α-MEM+10%FCS,SGC-7901用RPMI-1640+10%FCS,293細胞則用MEM+熱滅活的馬血清。
對于貼壁不是很緊的細胞,用45%DMEM+45%α-MEM+10%FCS有奇效~

5、操作中的一些小細節(jié)
實驗進行前,無菌室及無菌操作臺以紫外燈照射30分鐘滅菌,以70 %ethanol 擦拭無菌操作抬面,并開啟無菌操作臺風(fēng)扇運轉(zhuǎn)數(shù)分鐘后,才開始實驗操作。每次操作只處理一株細胞株,以避免失誤混淆或細胞間污染。實驗完畢后,將實驗物品帶出工作臺,以70 % ethanol 擦拭無菌操作抬面。操作間隔應(yīng)讓無菌操作臺運轉(zhuǎn)5分鐘以上后,再進行下一個細胞株之操作。

無菌操作工作區(qū)域應(yīng)保持清潔及寬敞,必要物品,例如試管架、吸管吸取器或吸管盒等可以暫時放置,其它實驗用品用完即應(yīng)移出,以利于氣流之流通。實驗用品以70 % ethanol 擦拭后才帶入無菌操作臺內(nèi)。實驗操作應(yīng)在抬面之中央無菌區(qū)域,勿在邊緣之非無菌區(qū)域操作。

小心取用無菌之實驗物品,避免造成污染。勿碰觸吸管尖頭部或是容器瓶口,亦不要在打開之容器正上方操作實驗。容器打開后,以手夾住瓶蓋并握住瓶身,傾斜約45° 角取用,盡量勿將瓶蓋蓋口朝上放置桌面。

定期檢測下列項目: CO2 鋼瓶之CO2 壓力 、CO2 培養(yǎng)箱之CO2 濃度、溫度、及水盤是否有污染(水盤的水用無菌水,每周更換)、無菌操作臺內(nèi)之a(chǎn)irflow 壓力,定期更換紫外線燈管及HEPA 過濾膜,預(yù)濾網(wǎng)(300小時/預(yù)濾網(wǎng),3000 小時/HEPA)、液氮罐中的液氮高度。 水槽可添加飽和硫酸銅溶液,并定期換水。

6、血清的相關(guān)問題
血清必須貯存于–20℃,若存放于4℃,不要超過一個月。如果一次無法用完一 瓶,可將40~45 ml 分裝于無菌50 ml 離心管中,預(yù)留此膨脹體積之空間,以免容器凍裂。

一般廠商提供之血清為無菌,不需再無菌過濾。若發(fā)現(xiàn)血清有許多懸浮物,則可將血清加入培養(yǎng)基內(nèi)一起過濾,勿直接過濾血清。
瓶裝(500ml) 血清一定要逐步解凍: 4℃冰箱溶解一天,至室溫下全溶后再分裝,在溶解過程中須規(guī)則搖晃均勻(小心勿造成氣泡),使溫度與成分均一,減少沉淀的發(fā)生。勿直接由–20℃直接至37℃解凍,因溫度改變太大,容易造成蛋白質(zhì)凝結(jié)而發(fā)生沉淀。

熱滅活是指56℃, 30 分鐘加熱已*解凍之血清。加熱過程中須規(guī)則搖晃均勻。此熱處理之目的是使血清中之補體成份 去活化。除非必須,一般不要作此熱處理,因為會造成沉淀物之顯著增多,且會影響血清之品質(zhì)。以我們實驗室做的對照試驗看,未滅活血清效果的確要好些。

7、貼壁細胞傳代培養(yǎng) :一般步驟為:真空泵吸走培養(yǎng)基,1XPBS漂洗兩次,加入1mlEDTA-Tripsin(100mm皿為例),37度放置數(shù)分鐘,輕拍培養(yǎng)瓶使細胞自瓶壁脫落,加入適量血清,以吸管上下吸放數(shù)次以打散細胞團塊,離心后加入新鮮培養(yǎng)基,按比例轉(zhuǎn)移至新皿。
細胞的傳代zui重要的是胰酶處理時間,若胰酶處理太久,容易造成細胞貼壁不緊,顯微鏡下觀察立體感不強,嚴重的時候甚至?xí)斐杉毎劳?。我談?wù)剛€人經(jīng)驗:HepG-2、A549、Hela、SGC-7901幾種癌細胞處理時間可適當(dāng)放長,一般處理5-6min,C2C12、COS-7、NIH-3T3比較容易脫落,2min足矣,P19Cl6和293細胞貼壁不緊,可在PBS漂洗后,直接換新鮮培養(yǎng)基打散。

8、細胞凍存及復(fù)蘇 :
首先說凍存液配方,常用的配方一般是兩種——90%FCS+10%DMSO或70%培養(yǎng)基+20%FCS+10%DMSO。前一種較貴,而且后一種凍存效果也不錯,因此本人一般選用第二種配方。對于比較脆弱的細胞則選用前一種凍存液。

凍存步驟比較簡單,前期處理同細胞傳代,只是在離心后是直接吸取上清,用手拍打離心管底部,加入適量凍存液使細胞*懸浮后分裝于凍存管。制后先將凍存管放入4℃冰箱,約40min。 接著置于-20℃冰箱,約60min。置于-80超低溫冰箱中放置過夜。 zui后置于液氮罐中長期保存。 同時做好凍存記錄,在自己的筆記本和凍存記錄本上均要記錄。
 


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