本實驗的目的是學會各種蛋白質含量的測定方法。了解各種測定方法的基本原理和優(yōu)缺點。
目前常用的有四種古老的經(jīng)典方法，即定氮法，雙縮尿法(Biuret法)、Folin－酚試劑法(Lowry法)和紫外吸收法。另外還有一種近十年才普遍使用起來的新的測定法，即考馬斯亮藍法(Bradford法)。其中Bradford法和Lowry法靈敏度zui高，比紫外吸收法靈敏10～20倍，比Biuret法靈敏100倍以上。定氮法雖然比較復雜，但較準確，往往以定氮法測定的蛋白質作為其他方法的標準蛋白質。
值得注意的是，這后四種方法并不能在任何條件下適用于任何形式的蛋白質，因為一種蛋白質溶液用這四種方法測定，有可能得出四種不同的結果。每種測定法都不是無缺的，都有其優(yōu)缺點。在選擇方法時應考慮：①實驗對測定所要求的靈敏度和度；②蛋白質的性質；③溶液中存在的干擾物質；④測定所要花費的時間。
考馬斯亮藍法(Bradford法)，由于其突出的優(yōu)點，正得到越來越廣泛的應用。
一、雙縮脲法(Biuret法)
(一)實驗原理
雙縮脲(NH3CONHCONH3)是兩 個分子脲經(jīng)180℃左右加熱，放出一個分子氨后得到的產物。在強堿性溶液中，雙縮脲與CuSO4形成紫色絡合物，稱為雙縮脲反應。凡具有兩個酰胺基或兩個直接連接的肽鍵，或能過一個中間碳原子相連的肽鍵，這類化合物都有雙縮脲反應。
操作方法：
1. 標準曲線的測定：取12支試管分兩組，分別加入0，0.2，0.4，0.6，0.8，1.0毫升的標準蛋白質溶液，用水補足到1毫升，然后加入4毫升雙縮脲試劑。充分搖勻后，在室溫(20~25℃)下放置30分鐘，于540nm處進行比色測定。用未加蛋白質溶液的*支試管作為空白對照液。取兩組測定的平均值，以蛋白質的含量為橫座標，光吸收值為縱座標繪制標準曲線。
2、樣品的測定：取2~3個試管，用上述同樣的方法，測定未知樣品的蛋白質濃度。注意樣品濃度不要超過10mg/ml。
二、微量凱氏(Kjeldahl)定氮法
樣品與濃硫 酸共熱。含氮有機物即分解產生氨(消化)，氨又與硫 酸作用，變成硫 酸氨。