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技術(shù)文章

如何開展單細胞qPCR分析(二)

閱讀:510發(fā)布時間:2013-4-10

如今,單細胞基因組學(xué)、轉(zhuǎn)錄組學(xué)、蛋白質(zhì)組學(xué)和代謝組學(xué)研究不再是遙不可及。利用新興的微流體方法和分子生物學(xué)技術(shù),研究人員逐漸能從群體噪音中提取單細胞信號?!禛enome Technology》雜志請來了一些專家,來分享他們在單細胞qPCR分析上的經(jīng)驗。通過一問一答的形式,希望能為您的研究帶來一點啟發(fā)。Q3:在改善單細胞qPCR實驗設(shè)計上,您有哪些建議?
Mikael Kubista(TATAA生物中心)
每個細胞可以測定的標志物數(shù)量是有限的,這就讓標志物的選擇很關(guān)鍵。選擇標志物的策略取決于研究目的。如果目標是研究表達通路和基因網(wǎng)絡(luò),那么選擇標準就與目標是區(qū)分細胞類型時*不同。一旦標準確定,可利用軟件(如GenEx)中的統(tǒng)計學(xué)選擇工具。
Anders Ståhlberg(哥德堡大學(xué))
單細胞基因表達譜分析通常需要多個RT-qPCR實驗。在開始單細胞實驗之前,應(yīng)當對細胞群體進行測定和分析。細胞群體測定將為您提供有用的信息,讓您清楚應(yīng)使用哪些實驗條件,并對目的基因的表達水平有個大概了解。
因經(jīng)費和時間限制,分析實驗條件和生物學(xué)重復(fù)通常是不可行的。對于*輪實驗,我們通常測定40-100個細胞中的10個基因,避免預(yù)擴增。這一數(shù)據(jù)將為您提供細胞異質(zhì)性和關(guān)鍵標志物表達水平的信息。之后,設(shè)計更大的實驗就會比較輕松。
Finn-Arne Weltzien(挪威獸醫(yī)學(xué)院)
一定要包含可靠的對照實驗,以避免假陽性。在制備和開展實驗時要特別小心,避免RNA降解或逆轉(zhuǎn)錄條件不佳。
Weiwen Zhang(亞利桑那州立大學(xué),現(xiàn)在天津大學(xué))
總的來說,下面三個步驟的效率對一個成功的單細胞分析很重要:細胞分離、RNA分離和cDNA合成、以及單細胞qPCR的引物設(shè)計。我們發(fā)現(xiàn),適合高豐度模板的引物不一定適合單細胞水平的qPCR模板。
Q4:您采取哪些步驟來減少實驗誤差以及噪音?
Mikael Kubista(TATAA生物中心)
建立可重復(fù)的實驗步驟是非常重要的。例如,可將裂解液分成幾等份,單獨分析和比較,以檢驗裂解。利用CelluLyser,我們發(fā)現(xiàn)各等份之間的一致性很好,說明細胞均勻地裂解。利用加熱或蒸餾水來裂解細胞通常產(chǎn)生異質(zhì)的裂解液,導(dǎo)致各等份不均一。通過RNA加標可檢測回收效率和重復(fù)性。我們設(shè)計了一個帶有5’帽子和A尾巴的通用加標,以模擬天然的mRNA。RNA加標可添加到裂解液中,或顯微注射到細胞中。逆轉(zhuǎn)錄也應(yīng)當優(yōu)化。因引物結(jié)合、目的基因和逆轉(zhuǎn)錄酶的不同,RT產(chǎn)量可相差200倍之多。此外,添加到RT預(yù)混液中的裂解液的量也必須仔細調(diào)整,以避免抑制,同時讓RT產(chǎn)量zui高。預(yù)擴增同樣應(yīng)該精心優(yōu)化和驗證。總的來說,重復(fù)性比避免偏向(bias)更關(guān)鍵,盡管這兩個參數(shù)通常是密切相關(guān)。
Anders Ståhlberg(哥德堡大學(xué))
所有實驗步驟都必須精心優(yōu)化。首先應(yīng)確保您采集的細胞代表了群體,且有著良好的RNA質(zhì)量。盡量減少不同實驗步驟之間的稀釋。這很重要,因為分子總數(shù)很少。不過,要避免加入過高濃度的去污劑、逆轉(zhuǎn)錄酶等,以免抑制下游實驗。逆轉(zhuǎn)錄、預(yù)擴增和qPCR都對抑制敏感。例如,逆轉(zhuǎn)錄酶可能抑制預(yù)擴增和qPCR。稀釋倍數(shù)取決于酶的選擇和品牌。如果只分析少數(shù)基因,應(yīng)避免預(yù)擴增,以免此步驟引入更多偏向。運行技術(shù)重復(fù)可能收獲不大。相反,應(yīng)盡可能地收集和分析更多細胞。
Finn-Arne Weltzien(挪威獸醫(yī)學(xué)院)
在制備和開展實驗時,必須一絲不茍。我們還用疏水物質(zhì)包被玻璃移液管,以避免帶電荷的核酸吸附在玻璃上,這可能導(dǎo)致假陽性。記住,qPCR引物必須是zui高質(zhì)量的,才能產(chǎn)生高質(zhì)量的結(jié)果。
Weiwen Zhang(亞利桑那州立大學(xué),現(xiàn)在天津大學(xué))
根據(jù)我們發(fā)表的結(jié)果,技術(shù)重復(fù)之間的誤差通常極小。然而,生物學(xué)重復(fù)之間的誤差就難以確定,因為無的對照存在。為了盡量減少單細胞之間的誤差,我們一般平行運行全部單細胞qPCR分析(包括RNA分離、cDNA合成和實時定量PCR),并在一塊PCR加熱板中(如ABI 48孔、96孔或384孔板)。


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