西班牙免校準多光阱光鑷

免校準、多光阱—專為細胞組織力學設(shè)計的光鑷

市場上wei一將高速多個光陷阱控制與直接力光譜相結(jié)合的光捕獲平臺。光鑷裝置安裝在科學倒置顯微鏡上，可根據(jù)您的顯微鏡配置進行定制，并可與轉(zhuǎn)盤共焦、落射熒光或 TIRF顯微鏡等多種成像技術(shù)相結(jié)合。其靈活性、精確性和易用性允許從一開始就進行的細胞力學實驗，即使對于非專家用戶也是如此。該系統(tǒng)是一款儀器，提供質(zhì)量的光學捕獲和力傳感技術(shù)， 能夠?qū)罴毎徒M織進行的操作和機械刺激，同時以直接、和非侵入的方式測量細胞力及其流變特性，所有這些都在科學實驗室的典型預(yù)算范圍內(nèi)。

光捕獲技術(shù)

基于聲光轉(zhuǎn)向技術(shù)，我們的光陷阱生成模塊允許以 25 kHz 的頻率同時生成和控制多達256 個光陷阱，比基于振鏡的系統(tǒng)快一個數(shù)量級。光鑷裝置包括單頻紅外激光源（5W，1064nm）。我們直觀且用戶友好的 LightAce 控制軟件將允許您單獨手動控制每個光陷阱或?qū)?span style="font-weight: 700; border: 0px; margin: 0px; padding: 0px;">自動軌跡、周期性振蕩和變形模式進行編程，并將它們同時應(yīng)用于多個光陷阱。該系統(tǒng)允許記錄細胞力學實驗的視頻，并與多個同步光阱的記錄力和位置數(shù)據(jù)同步。

力譜技術(shù)

我們的基于光動量變化檢測的直接力傳感器是該儀器的核心。我們獲得的力譜技術(shù)將允許您測量復(fù)雜介質(zhì)中的光學捕獲力，例如不規(guī)則物體上的活細胞和組織內(nèi)部，并且遠遠超出力-距離曲線的線性區(qū)域，從而為的細胞力學實驗打開了大門在體內(nèi)條件下。部分？無需校準即可獨立于樣品和介質(zhì)特性來測量力！ 我們的直接力傳感器將允許您同時測量多個陷阱 (256) 上的力，使用其力反饋回路執(zhí)行力夾緊，精確控制樣品平面上的激光照射功率并跟蹤被捕獲物體的位置。

在細胞力學和軟物質(zhì)物理中的應(yīng)用

該系統(tǒng)是細胞力學和軟物質(zhì)物理研究人員的工具，使用微球、全細胞或內(nèi)源性細胞結(jié)構(gòu)作為探針來機械刺激和感測您的樣品，提供多種應(yīng)用：

• 單分子水平的機械感受器力
• 細胞膜系鏈拉動和變形。
• 主動流變學：細胞和生物組織的彈性、粘度和剛度。
• 細胞核機械 轉(zhuǎn)導(dǎo)。
• 細胞間相互作用和粘附力。
• 體內(nèi)和體外運動蛋白動力學。
• 微型游泳者和細菌細胞運動力。

可以在已有顯微鏡上升級配置起來，免校準、使用簡潔方便、經(jīng)濟。

★可直接自動測量細胞內(nèi)和組織環(huán)境中微粒的受力,自動化細胞力學研究流程
★免校準測量, te適合測量不規(guī)則顆粒受力
★多光阱捕獲和同步測量（>256個光阱）
★可高精度探測溶液、細胞內(nèi)和組織內(nèi)微環(huán)境的粘彈性
★同時熒光成像
★光鑷不需要熒光標定，減少人為干預(yù)
★探測力的方式為光子動量改變，所以適合測量復(fù)雜環(huán)境難以用傳統(tǒng)方式校準的樣品，以及不規(guī)則顆粒
★多光阱同步測量，可追蹤多個光阱的受力；
★操作方便，點擊屏幕即可設(shè)置光阱，拖動光阱捕獲目標顆粒，減少用戶的移動樣品池的操作；
★有微流變的測量模塊，適合探測細胞內(nèi)和組織內(nèi)微環(huán)境的粘彈性
★三維高精度力學測量與操控

典型應(yīng)用：
世聯(lián)博研(北京)科技有限公司專注細胞力學和3D生物打印服務(wù)，客服電話：
★1、細胞層次的力學檢測:
1.1、單細胞膜的受力-形變
測量細胞膜的彈性，捕獲手柄小球擠壓和拉伸細胞膜，測量受力與形變量的關(guān)系。
可研究細胞膜的彈性與細胞骨架蛋白的關(guān)系等。
1.2、單細胞上配體-受體相互作用力檢測
捕獲手柄小球（修飾有相應(yīng)抗體或者結(jié)合蛋白）接觸細胞表面，當配體-受體結(jié)合后拉伸時，測量小球受到光阱的
力，量化配體-受體結(jié)合對的作用力大小。
可研究免疫細胞的te異性識別機制及細胞表面分子和抗體分子間的相互作用等。
1.3 、細胞-細胞相互作用檢測
直接捕獲細胞接觸靶細胞，待細胞結(jié)合一定時間后拉伸細胞，可測量細胞-細胞相互作用的力；還可控制細胞受到te
定刺激；
可原位研究細胞膜表面配體-受體相互作用力大小，以及免疫突觸形成等。
1.4 、單/多細胞的j化和遷移與應(yīng)力刺激（包括單細胞應(yīng)力加載培養(yǎng)）
可借助手柄小球在細胞局域上施加應(yīng)力刺激，研究細胞的j化，以及細胞遷移與應(yīng)力刺激的關(guān)系。

★2、分子層次的動力學te性:
2.1、DNA/RNA的動力學te性
將DNA/RNA通過偶聯(lián)接到手柄小球上，光阱控制手柄小球拉伸生物大分子，可獲得DNA的hairpin結(jié)構(gòu)和RNA的stem
結(jié)構(gòu)打開的力學特征，以及結(jié)合蛋白對其動力學te性的影響。
2.2、 蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)域的受力調(diào)控
將蛋白質(zhì)通過巰基結(jié)合DNA末端，將手柄DNA鏈接到微球上，光阱拉伸微球，可研究蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)折疊和去折疊的力
學特征。
2.3、 馬達蛋白的動力學te性
將馬達蛋白分子偶聯(lián)在微球上，通過光阱將微球定位到microtubule或actin骨架蛋白上，馬達分子消耗ATP分子轉(zhuǎn)化為
機械能，可研究分子馬達的運動的動力學te性和多分子協(xié)同運動te性。

★3、多顆粒操縱和細胞分選:
3.1、多顆粒操縱
可自由操縱多個顆粒進行空間排列及運動探測。
3.2、te定細胞分離
可將目標細胞捕獲移動到區(qū)域，便于分離細胞。

★4、粘彈性測量:
4.1、細胞內(nèi)粘彈性
光阱捕獲細胞內(nèi)的囊泡，以囊泡的主動/被動運動反演微流變te性，獲得粘性和彈性模量。
4.2、 組織微環(huán)境的粘彈性
捕獲導(dǎo)入的微粒，探測微粒的主動/被動運動反演微流變te性，獲得粘性和彈性的模量。采用多光阱同時測量，可鑒
別不同區(qū)域的粘彈性。

★5、剛度、硬度測量:

應(yīng)用文獻案例：

• •R. Meissner, N. Oliver and C.Denz. “Optical Force Sensing with Cylindrical Microcontainers“.Part. Part. Syst. Charact. 2018, 1800062.
• •F.Català, F. Marsà, M. Montes Usategui, A. Farré & E. Martín-Badosa. “Influence of experimental parameters on the laser heating of an optical trap“. Sci. Rep. 7, 16052; doi:10.1038/s41598-017-15904-6 (2017).
• •Català, F. et al. “Extending calibration-free force measurements to optically-trapped rod-shaped samples“. Sci. Rep. 7, 42960; doi: 10.1038/srep42960 (2017).
• •R. Bola, F. Català. M. Montes-Usategui, E. Martín-Badosa. “Optical tweezers for force measurements and rheological studies on biological samples”.15th workshop on Information Optics (WIO), 2016.
• •Martín-Badosa, F. Català, J. Mas, M. Montes-Usategui, A. Farré, F. Marsà. “Force measurement in the manipulation of complex samples with holographic optical tweezers”15th workshop on Information Optics (WIO), 2016.
• Derek Craig, Alison McDonald, Michael Mazilu, Helen Rendall, Frank Gunn-Moore, and Kishan Dholakia. “ Enhanced Optical Manipulation of Cells Using Antireflection Coated Microparticles”.ACS Photonics, 2 (10), pp 1403–1409, (2015).
• •Xing Ma, Anita Jannasch, Urban-Raphael Albrecht, Kersten Hahn, Albert Miguel-López, Erik Sch?ffer, and Samuel Sánchez. “Enzyme-Powered Hollow Mesoporous Janus Nanomotors”. Nano Lett., 15 (10), pp 7043–7050, (2015).
• •Michael A. Taylor, Muhammad Waleed, Alexander B. Stilgoe, Halina Rubinsztein-Dunlop and Warwick P. Bowen. “Enhanced optical trapping via structured scattering“. Nature Photonics 9,669–673 (2015)
• •Gregor Thalhammer, Lisa Obmascher, and Monika Ritsch-Marte, “Direct measurement of axial optical forces“.Optics Express, Vol. 23, Issue 5, pp. 6112-6129 (2015)
• •Y. Jun, S.K. Tripathy, B.R.J. Narayanareddy, M. K. Mattson-Hoss, S.P. Gross, “Calibration of Optical Tweezers for In Vivo Force Measurements: How do Different Approaches Compare?”. Biophysical Journal, V 107, 1474-1484 (2014).
• •A. Farré, E. Martín-Badosa, and M. Montes-Usategui, “The measurement of light momentum shines the path towards the cell”, Opt. Pur Apl. 47, 239-248 (2014).
• •A. Farré, F. Marsà, and M. Montes-Usategui, “A force measurement instrument for optical tweezers based on the detection of light momentum changes”, Proc. SPIE 9164, 916412 (2014).
• •J. Mas, A. Farré, J. Sancho-Parramon, E. Martín-Badosa, and M. Montes-Usategui, “Force measurements with optical tweezers inside living cells”,  Proc. SPIE 9164, 91640U (2014).
• •F. Català, F. Marsà, A. Farré, M. Montes-Usategui, and E. Martín-Badosa, “Momentum measurements with holographic optical tweezers for exploring force detection capabilities on irregular samples”, Proc. SPIE 9164, 91640A (2014).
• •A. Farré, F. Marsà, and M. Montes-Usategui, “Optimized back-focal-plane interferometry directly measures forces of optically trapped particles” Opt. Express 20, 12270-12291 (2012).